C2C12เป็นเซลล์ไมโอบลา สต์ ของหนู ที่ไม่ตายตัว เซลล์ สายพันธุ์ C2C12 เป็นซับโคลนของไมโอบลาสต์ที่ Yaffe และ Saxel ได้รับมาครั้งแรกที่สถาบันวิทยาศาสตร์ Weizmannในอิสราเอลในปี 1977 ^{[ 1 ]} เซลล์ C2C12 พัฒนาขึ้นเพื่อใช้ในการศึกษาไมโอบลาสต์ในหลอดทดลองที่แยกได้จากปฏิสัมพันธ์ที่ซับซ้อนของ สภาวะ ในร่างกายและมีประโยชน์ในการวิจัยทางชีวการแพทย์^{[ 2 ]}เซลล์เหล่านี้สามารถเพิ่มจำนวนอย่างรวดเร็วภายใต้ สภาวะที่ มีซีรั่ม สูง และแยกตัวเป็นไมโอทิวบ์ภายใต้สภาวะที่มีซีรั่มต่ำ ไมโอบลาสต์ที่มีนิวเคลียสเดียวสามารถรวมตัวกันเพื่อสร้างไมโอทิวบ์ที่มีหลายนิวเคลียสภายใต้สภาวะที่มีซีรั่มต่ำหรือภาวะอดอาหาร ซึ่งนำไปสู่สารตั้งต้นของเซลล์กล้ามเนื้อโครงร่างที่หดตัวได้ในกระบวนการสร้างกล้ามเนื้อ^{[ 3 ]}เซลล์ C2C12 ถูกนำมาใช้เพื่อศึกษาการแยกตัวของไมโอบลาสต์ ออสทีโอบลาสต์และไมโอเจเนซิส เพื่อแสดงโปรตีนเป้าหมายต่างๆ และเพื่อสำรวจเส้นทางชีวเคมีเชิงกลไก

เซลล์ C2C12 ชนิดปกติมีโครงสร้างแบบแตกแขนงรัศมี ประกอบด้วยเส้นใยยาวที่ยื่นออกไปในหลายทิศทาง เซลล์ C2C12 สามารถเพาะเลี้ยงได้ในสภาวะต่างๆ เพื่อกระตุ้นการตอบสนองที่ต้องการ ตัวอย่างเช่น ด้วยอัตราการแยกตัวและการรวมตัวที่สูงของเซลล์สายพันธุ์นี้ แม่แบบ ไฟโบรเนคตินสามารถนำไปเพาะเลี้ยงในจานเพาะเชื้อหรือขวดเพาะเลี้ยงเซลล์เพื่อกระตุ้นรูปแบบการเจริญเติบโตที่เฉพาะเจาะจง เช่น ปฏิสัมพันธ์ของเซลล์กล้ามเนื้อโครงร่างกับส่วนประกอบของเมทริกซ์นอกเซลล์^{[ 4 ]}การนำโมเลกุลการยึดเกาะเข้ามาสามารถเปลี่ยนแปลงรูปแบบการเจริญเติบโตของเซลล์ C2C12 ไปเป็นการกระจายตัวตามแนวยาวที่แสดงขั้ว^{[ 5 ]}มีหลายวิธีในการควบคุมรูปร่างของไมโอบลาสต์ C2C12 ทั้งทางพันธุกรรมและสิ่งแวดล้อม ตั้งแต่ความเครียด การเปลี่ยนแปลง โครงสร้างเซลล์ ไป จนถึงปัจจัยการเจริญเติบโต โครงสร้างค้ำยันของเซลล์ C2C12 มีความสำคัญอย่างยิ่งสำหรับการศึกษาการสร้างเนื้อเยื่อกล้ามเนื้อขึ้นใหม่หลังการบาดเจ็บ หรือหลังการสูญเสียเนื้อเยื่อเนื่องจากโรค หรือการฟื้นฟูในห้องไอซียู

เซลล์ C2C12 ได้รับการพิสูจน์แล้วว่าสามารถรวมcDNAและกรดนิวคลีอิกจากภายนอกได้อย่างมีประสิทธิภาพโดยการถ่ายโอนในการวิจัยนำร่องที่ดำเนินการโดย Yaffe และ Saxel ในตอนแรก เซลล์ C2C12 ได้มาจากการเพาะเลี้ยงไมโอบลาสต์จากกล้ามเนื้อต้นขาของหนู C3H หลังจากได้รับบาดเจ็บจากการบดอัด ในการศึกษาของพวกเขา เซลล์ C2C12 ชุดหนึ่งถูกเพาะเลี้ยงจากไมโอบลาสต์ของหนูปกติ ซึ่งเพาะเลี้ยงจากหนู C3H อายุสองเดือนหลังจากได้รับบาดเจ็บจากการบดอัด ภายในสองวัน เซลล์ปกติจะแตกต่างไปเป็นไมโอบลาสต์รูปทรงกระสวยที่มีนิวเคลียสเดียว หลังจากสี่วัน เครือข่ายไมโอทิวบ์ที่มีนิวเคลียสหลายอันจะก่อตัวขึ้น และอีกไม่กี่วันต่อมา ก็สามารถสังเกตเห็น ซาร์โคเมียร์และเส้น Z ได้^{[ 6 ]}ในทางตรงกันข้าม เซลล์ที่เสื่อมสภาพจะก่อตัวเป็นเส้นใยที่สั้นลงซึ่งปกคลุมด้วยไฟโบรบลาสต์ซึ่งเป็นลักษณะเด่นของการสูญเสียกล้ามเนื้อ^{[ 1 ]}

เซลล์ C2C12 แสดงให้เห็นถึงการพัฒนาและการเจริญเติบโตอย่างรวดเร็วไปเป็นเซลล์กล้ามเนื้อโครง ร่าง หรือเซลล์กล้ามเนื้อหัวใจที่มีฟังก์ชันการทำงาน โดยมีความสามารถในการหดตัวและสร้างแรง^{[ 6 ]}อัตราการสร้างกล้ามเนื้อจากเซลล์ C2C12 สามารถควบคุมได้โดยการนำยีนที่สูญเสียการทำงานซึ่งมีความสำคัญต่อการรวมตัวของไมโอบลาสต์และไมโอเจเนซิส^{[ 7 ]}ภายใต้สภาวะเนื้อตาย เช่น ปัจจัยเนื้อตายของเนื้องอกอัลฟา ( TNF-α ) ได้มีการแสดงให้เห็นถึงการสูญเสียโปรตีนโดยตรง โดยเฉพาะ โปรตีน ไมโอซินเฮฟวีเชนในเซลล์กล้ามเนื้อโครงร่าง C2C12 ^{[ 8 ]}เซลล์ C2C12 ถูกนำมาใช้เพื่ออธิบาย การจำลอง โครโมโซม X ที่ไม่ทำงาน (Xi) ในช่วงS-phase ตอนต้น ของวงจรเซลล์และถูกควบคุมโดยเอพิเจเนติกส์^{[ 9 ]}เซลล์ C2C12 สะดวกเป็นพิเศษสำหรับการศึกษาวงจรเซลล์เนื่องจากมีอัตราการแบ่งตัวสูง

ปัจจุบันห้องปฏิบัติการส่วนใหญ่ใช้ซับโคลน C2C12 ที่พัฒนาโดย Helen Blau จากสายเซลล์ดั้งเดิมโดย Yaffe และ Saxel ^{[ 10 ]}เซลล์เหล่านี้เป็นอมตะซึ่งหมายความว่าพวกมันจะเพิ่มจำนวนอย่างไม่มีที่สิ้นสุดเนื่องจากการกลายพันธุ์ทางพันธุกรรม การกลายพันธุ์ที่ทำให้เกิดสิ่งนี้ในเซลล์กล้ามเนื้อโครงร่าง C2C12 เชื่อว่าอยู่ในยีน INK4a (CDKN2A ) ^{[ 11 ] [ 12 ]}

การกระตุ้นด้วยพัลส์ไฟฟ้า (EPS) เป็นวิธีการในหลอดทดลองที่ใช้เพื่อจำลองการหดตัวของกล้ามเนื้อในเซลล์เพาะเลี้ยง ทำให้สามารถศึกษาการปรับตัวที่เกี่ยวข้องกับการออกกำลังกาย เช่น การเปลี่ยนแปลงของการเผาผลาญ การทำงานของไมโทคอนเดรีย และการแสดงออกของยีน ในไมโอทิวบ์ C2C12 สามารถใช้ EPS เพื่อตรวจสอบกระบวนการต่างๆ เช่น การดูดซึมกลูโคส ความไวต่ออินซูลิน และความเมื่อยล้าของกล้ามเนื้อ การทบทวนอย่างเป็นระบบของงานวิจัยที่ตีพิมพ์ 54 ฉบับพบว่าการตั้งค่าที่ใช้กันทั่วไปมากที่สุด ได้แก่ แรงดันไฟฟ้า 10–20 V ระยะเวลาพัลส์ 2 ms ความถี่ 1 Hz และระยะเวลาการกระตุ้นประมาณ 24 ชั่วโมง^{[ 13 ]}ควรพิจารณาโปรโตคอลที่แน่นอนโดยอิงตามเป้าหมายของการทดลอง

• ข้อมูล Cellosaurus สำหรับ C2C12
• หน้าขายสินค้า ATCC สำหรับ C2C12