The assembly and function of bacterial flagella requires over 50 proteins in coordination.^[22] The bacterial flagellum is made up of protein subunits of flagellin.^[13] Its shape is a 20-nanometer-thick hollow tube. It is helical and has a sharp bend just outside the outer membrane; this "hook" allows the axis of the helix to point directly away from the cell. A shaft runs between the hook and the basal body, passing through protein rings in the cell's membrane that act as bearings. Gram-positive organisms have two of these basal body rings, one in the peptidoglycan layer and one in the plasma membrane. Gram-negative organisms have four such rings: the L ring associates with the lipopolysaccharides, the P ring associates with peptidoglycan layer, the M ring is embedded in the plasma membrane, and the S ring is directly attached to the cytoplasm. The filament ends with a capping protein.^[23][24]

The flagellar filament is the long, helical screw that propels the bacterium when rotated by the motor, through the hook. In most bacteria that have been studied, including the gram-negative Escherichia coli, Salmonella typhimurium, Caulobacter crescentus, and Vibrio alginolyticus, the filament is made up of 11 protofilaments approximately parallel to the filament axis. Each protofilament is a series of tandem protein chains. However, Campylobacter jejuni has seven protofilaments.^[25]

The basal body has several traits in common with some types of secretory pores, such as the hollow, rod-like "plug" in their centers extending out through the plasma membrane. The similarities between bacterial flagella and bacterial secretory system structures and proteins provide scientific evidence supporting the theory that bacterial flagella evolved from the type-three secretion system (TTSS).

The atomic structure of both bacterial flagella as well as the TTSS injectisome have been elucidated in great detail, especially with the development of cryo-electron microscopy. The best understood parts are the parts between the inner and outer membrane, that is, the scaffolding rings of the inner membrane (IM), the scaffolding pairs of the outer membrane (OM), and the rod/needle (injectisome) or rod/hook (flagellum) sections.^[26]

Bacterial flagellar motor assembly

Shown here is the C-ring at the base with FliG in red, FliM in yellow, and FliN in shades of purple; the MS-ring in blue; the MotAB in brown; the LP-ring in pink; and the rod in gray.^[27]

---

Nature's incredible rotating motor – YouTube

แฟลเจลลัมของแบคทีเรียถูกขับเคลื่อนด้วยเครื่องยนต์หมุน ( คอมเพล็กซ์ Mot ) ที่ประกอบด้วยโปรตีน ซึ่งตั้งอยู่ที่จุดยึดของแฟลเจลลัมบนเยื่อหุ้มเซลล์ชั้นใน เครื่องยนต์นี้ขับเคลื่อนด้วยแรงขับเคลื่อนโปรตอนกล่าวคือ ด้วยการไหลของโปรตอน (ไอออนไฮโดรเจน) ข้ามเยื่อหุ้มเซลล์ของแบคทีเรียเนื่องจากความแตกต่างของความเข้มข้นที่สร้างขึ้นโดยกระบวนการเผาผลาญของเซลล์ ( สายพันธุ์ Vibrioมีแฟลเจลลัมสองชนิด คือ ด้านข้างและขั้ว และบางชนิดถูกขับเคลื่อนด้วยปั๊มไอออน โซเดียม แทนที่จะเป็นปั๊มโปรตอน^{[ 28 ]} ) โรเตอร์จะขนส่งโปรตอนข้ามเยื่อหุ้มเซลล์และหมุนไปในกระบวนการ โรเตอร์เพียงอย่างเดียวสามารถทำงานได้ที่ 6,000 ถึง 100,000 รอบต่อนาที^{[ 29 ]}แต่เมื่อมีเส้นใยแฟลเจลลัมติดอยู่ มักจะถึงเพียง 200 ถึง 1000 รอบต่อนาทีเท่านั้น ทิศทางการหมุนสามารถเปลี่ยนแปลงได้เกือบจะในทันทีโดยสวิตช์มอเตอร์แฟลเจลลัมซึ่งเกิดจากการเปลี่ยนแปลงเล็กน้อยในตำแหน่งของโปรตีนFliGในโรเตอร์^{[ 30 ]}หน่วยสร้างแรงบิดคือสเตเตอร์ ซึ่งเป็นมอเตอร์หมุนที่ขับเคลื่อนด้วยโปรตอนซึ่งขับเคลื่อนมอเตอร์แฟลเจลลาหลักของแบคทีเรีย จากสเตเตอร์ การหมุนของเพนทาเมอร์ MotA5 รอบไดเมอร์ MotB2 จะยึดติดกับผนังเซลล์ซึ่งเชื่อมโยงโดยตรงกับการหมุนของวงแหวน C ดังนั้น มอเตอร์สเตเตอร์สร้างแรงบิดแต่ละตัวและโรเตอร์มอเตอร์แฟลเจลลาจึงทำหน้าที่เหมือนเฟืองที่ขบกันด้วยอัตราส่วนเกียร์ 6.2 ^{[ 31 ] [ 32 ]}มีการสังเกตพบมอเตอร์สเตเตอร์ระหว่าง 11 ถึง 16 ตัวที่สัมพันธ์โดยตรงกับโรเตอร์มอเตอร์แฟลเจลลาในแบคทีเรียต่างๆ^{[ 33 ]}แรงบิดจะถูกถ่ายโอนจาก MotAB ไปยังเกลียวแรงบิดบนโดเมน D5 ของ FliG และเมื่อความต้องการแรงบิดหรือความเร็วเพิ่มขึ้น จะมีการใช้ MotAB มากขึ้น^{[ 27 ]}เนื่องจากมอเตอร์แฟลเจลลัมไม่มีสวิตช์เปิด-ปิด โปรตีน epsE จึงถูกใช้เป็นคลัตช์เชิงกลเพื่อแยกมอเตอร์ออกจากโรเตอร์ ทำให้แฟลเจลลัมหยุดทำงานและช่วยให้แบคทีเรียคงอยู่ในตำแหน่งเดิม^{[ 34 ]}

การผลิตและการหมุนของแฟลเจลลัมอาจใช้พลังงานมากถึง 10% ของ งบประมาณพลังงานของเซลล์ Escherichia coliซึ่งให้ประโยชน์ในระยะยาว เนื่องจากสิ่งใดก็ตามที่ก่อให้เกิดข้อเสียเปรียบด้านความเหมาะสม อาจถูกกำจัดออกไปเมื่อเวลาผ่านไป^{[ 22 ]}การทำงานของมันก่อให้เกิดอนุมูลออกซิเจนที่ทำให้เกิดอัตราการกลายพันธุ์สูงขึ้น^{[ 22 ]}

รูปทรงกระบอกของแฟลเจลลานั้นเหมาะสมกับการเคลื่อนที่ของสิ่งมีชีวิตขนาดเล็ก สิ่งมีชีวิตเหล่านี้ทำงานที่เลขเรย์โนลด์ ต่ำ ซึ่งความหนืดของน้ำโดยรอบมีความสำคัญมากกว่ามวลหรือความเฉื่อย^{[ 35 ]}

ความเร็วในการหมุนของแฟลเจลลาจะแปรผันตามความเข้มของแรงขับเคลื่อนโปรตอน ซึ่งทำให้สามารถควบคุมความเร็วได้ในบางรูปแบบ และยังทำให้แบคทีเรียบางชนิดมีความเร็วที่น่าทึ่งเมื่อเทียบกับขนาดของมัน บางชนิดมีความเร็วประมาณ 60 เท่าของความยาวเซลล์ต่อวินาที ด้วยความเร็วเช่นนี้ แบคทีเรียจะใช้เวลาประมาณ 245 วันในการเดินทาง 1  กิโลเมตร แม้ว่าอาจดูช้า แต่แนวคิดจะเปลี่ยนไปเมื่อมีการนำแนวคิดเรื่องขนาดเข้ามาพิจารณา เมื่อเปรียบเทียบกับสิ่งมีชีวิตขนาดใหญ่แล้ว ถือว่าเร็วมากเมื่อแสดงในแง่ของจำนวนความยาวลำตัวต่อวินาที ตัวอย่างเช่น เสือชีตาห์มีความเร็วเพียงประมาณ 25 เท่าของความยาวลำตัวต่อวินาที^{[ 36 ]}

แบคทีเรียสามารถเคลื่อนที่อย่างรวดเร็วไปยังสารดึงดูดและหนีจากสารขับไล่โดยใช้แฟลเจลลา โดยอาศัยการเดินแบบสุ่มที่มีอคติโดยการวิ่งและการหมุนตัวเกิดขึ้นจากการหมุนแฟลเจลลัมทวนเข็ม นาฬิกา และ ตาม เข็มนาฬิกาตามลำดับ ทิศทางการหมุนทั้งสองไม่เหมือนกัน (ในแง่ของการเคลื่อนที่ของแฟลเจลลัม) และถูกเลือกโดยสวิตช์ระดับโมเลกุล^{[ 37 ]}การหมุนตามเข็มนาฬิกาเรียกว่าโหมดแรงดึงโดยที่ตัวแบคทีเรียจะตามแฟลเจลลัมไป การหมุนทวนเข็มนาฬิกาเรียกว่าโหมดแรงขับโดยที่แฟลเจลลัมจะล้าหลังตัวแบคทีเรีย^{[ 38 ]}

ระหว่างการประกอบแฟลเจลลัม ส่วนประกอบของแฟลเจลลัมจะผ่านแกนกลวงของฐานและเส้นใยที่กำลังก่อตัว ระหว่างการประกอบ ส่วนประกอบโปรตีนจะถูกเพิ่มที่ปลายแฟลเจลลัมแทนที่จะเป็นที่ฐาน^{[ 39 ]}ในหลอดทดลองเส้นใยแฟลเจลลัมจะประกอบขึ้นเองในสารละลายที่มีแฟลเจลลินบริสุทธิ์เป็นโปรตีนเพียงชนิดเดียว^{[ 40 ]}

อย่างน้อย 10 ส่วนประกอบโปรตีนของแฟลเจลลัมของแบคทีเรียมีโปรตีนที่คล้ายคลึงกันกับระบบการหลั่งแบบที่สาม (T3SS) ที่พบในแบคทีเรียแกรมลบหลายชนิด^{[ 41 ]}ดังนั้นจึงเป็นไปได้ว่าระบบหนึ่งวิวัฒนาการมาจากอีกระบบหนึ่ง เนื่องจาก T3SS มีจำนวนส่วนประกอบใกล้เคียงกับอุปกรณ์แฟลเจลลัม (ประมาณ 25 โปรตีน) จึงเป็นการยากที่จะระบุว่าระบบใดวิวัฒนาการมาก่อน อย่างไรก็ตาม ระบบแฟลเจลลัมดูเหมือนจะมีโปรตีนโดยรวมมากกว่า รวมถึงตัวควบคุมและชาเปอโรนต่างๆ ดังนั้นจึงมีการโต้แย้งว่าแฟลเจลลัมวิวัฒนาการมาจาก T3SS อย่างไรก็ตาม ยังมีข้อเสนอแนะอีกด้วย^{[ 42 ]}ว่าแฟลเจลลัมอาจวิวัฒนาการมาก่อนหรือโครงสร้างทั้งสองอาจวิวัฒนาการไปพร้อมๆ กัน ความต้องการ การเคลื่อนที่ (ความคล่องตัว) ของสิ่งมีชีวิตเซลล์เดียวในยุคแรกๆ สนับสนุนว่าแฟลเจลลาที่เคลื่อนที่ได้คล่องตัวกว่าจะถูกคัดเลือกโดยวิวัฒนาการก่อน ^{[ 42 ]}แต่ T3SS ที่วิวัฒนาการมาจากแฟลเจลลัมสามารถมองได้ว่าเป็น 'วิวัฒนาการแบบลดทอน' และไม่ได้รับการสนับสนุนทางโทโพโลยีจากแผนภูมิวิวัฒนาการ^{[ 43 ]}สมมติฐานที่ว่าโครงสร้างทั้งสองวิวัฒนาการแยกจากกันจากบรรพบุรุษร่วมกัน อธิบายถึงความคล้ายคลึงกันของโปรตีนระหว่างโครงสร้างทั้งสอง รวมถึงความหลากหลายทางหน้าที่ของพวกมันด้วย^{[ 44 ]}

ผู้เขียนบางคนโต้แย้งว่าแฟลเจลลาไม่สามารถวิวัฒนาการได้ โดยสันนิษฐานว่าแฟลเจลลาจะทำงานได้อย่างถูกต้องก็ต่อเมื่อโปรตีนทั้งหมดอยู่ในตำแหน่งที่ถูกต้องเท่านั้น กล่าวอีกนัยหนึ่งคือ อุปกรณ์แฟลเจลลาเป็น " โครงสร้างที่ซับซ้อนอย่างไม่อาจลดทอนได้ " ^{[ 45 ]}อย่างไรก็ตาม โปรตีนหลายชนิดสามารถถูกลบหรือกลายพันธุ์ได้ และแฟลเจลลัมก็ยังคงทำงานได้ แม้บางครั้งจะมีประสิทธิภาพลดลง^{[ 46 ]}ยิ่งไปกว่านั้น ด้วยโปรตีนหลายชนิดที่มีลักษณะเฉพาะในบางสายพันธุ์ ความหลากหลายขององค์ประกอบแฟลเจลลาของแบคทีเรียจึงสูงกว่าที่คาดไว้[ 47 ] ดังนั้น อุปกรณ์แฟลเจลลาจึงมีความยืดหยุ่นมากในแง่ของวิวัฒนาการ และสามารถสูญเสียหรือได้รับส่วนประกอบของโปรตีนได้อย่างสมบูรณ์ ตัวอย่างเช่น พบการกลายพันธุ์จำนวนหนึ่งที่เพิ่มความสามารถในการเคลื่อนที่ของ E. coli ^{[ 48 ]}หลักฐานเพิ่มเติมสำหรับการวิวัฒนาการของ^{แฟลเจ}ลลาของแบคทีเรีย ได้แก่ การมีอยู่ของแฟลเจลลาที่เหลืออยู่ รูปแบบแฟลเจลลาขั้นกลาง และรูปแบบความคล้ายคลึงกันในลำดับโปรตีนแฟลเจลลา รวมถึงการสังเกตว่าโปรตีนแฟลเจลลาหลักเกือบทั้งหมดมีความคล้ายคลึงกับโปรตีนที่ไม่ใช่แฟลเจลลา^{[ 41 ]}นอกจากนี้ ยังมีการระบุถึงกระบวนการหลายอย่างที่มีบทบาทสำคัญในการวิวัฒนาการของแฟลเจลลา ซึ่งรวมถึงการประกอบตัวเองของหน่วยย่อยที่ซ้ำกันอย่างง่าย การจำลองยีนพร้อมกับการแยกตัวในภายหลัง การดึงเอาองค์ประกอบจากระบบอื่นมาใช้ ('การประกอบโมเลกุล') และการรวมตัวกันใหม่^{[ 49 ]}

แบคทีเรียสายพันธุ์ต่าง ๆ มีจำนวนและการจัดเรียงของแฟลเจลลาที่แตกต่างกัน^{[ 50 ] [ 51 ]}ซึ่งตั้งชื่อโดยใช้คำว่าtrichoจากภาษากรีกtrichosที่แปลว่าขน^{[ 52 ]}

• แบคทีเรีย โมโนทริคัสเช่นVibrio cholerae มี แฟลเจลลัมขั้วเดียว^{[ 53 ]}
• แบคทีเรียแอม ฟิทริคัสมีแฟลเจลลัมเพียงเส้นเดียวที่ปลายทั้งสองข้างตรงข้ามกัน (เช่นCampylobacter jejuniหรือAlcaligenes faecalis ) โดยแฟลเจลลัมทั้งสองจะหมุนแต่ทำงานประสานกันเพื่อสร้างแรงผลักดันที่สอดคล้องกัน
• Lophotrichous bacteria (lopho Greek combining term meaning crest or tuft)^[54] have multiple flagella located at the same spot on the bacterial surface such as Helicobacter pylori, which act in concert to drive the bacteria in a single direction. In many cases, the bases of multiple flagella are surrounded by a specialized region of the cell membrane, called the polar organelle.
• Peritrichous bacteria have flagella projecting in all directions (e.g., E. coli).

Spirochetes, in contrast, have flagella called endoflagella arising from opposite poles of the cell, and are located within the periplasmic space as shown by breaking the outer-membrane and also by electron cryotomography microscopy.^[55] The rotation of the filaments relative to the cell body causes the entire bacterium to move forward in a corkscrew-like motion, even through material viscous enough to prevent the passage of normally flagellated bacteria.

In certain large forms of Selenomonas, more than 30 individual flagella are organized outside the cell body, helically twining about each other to form a thick structure (easily visible with the light microscope) called a "fascicle".

In some Vibrio spp. (particularly Vibrio parahaemolyticus^[56]) and related bacteria such as Aeromonas, two flagellar systems co-exist, using different sets of genes and different ion gradients for energy. The polar flagella are constitutively expressed and provide motility in bulk fluid, while the lateral flagella are expressed when the polar flagella meet too much resistance to turn.^{[57][58][59][60][61][62]} These provide swarming motility on surfaces or in viscous fluids.

เพื่อเน้นย้ำความแตกต่างระหว่างแฟลเจลลาของแบคทีเรียและซิเลียและแฟลเจลลาของยูคาริโอต ผู้เขียนบางคนพยายามแทนที่ชื่อของโครงสร้างยูคาริโอตทั้งสองนี้ด้วย " อันดูลิโพเดีย " (เช่น บทความทั้งหมดของMargulisตั้งแต่ปี 1970 เป็นต้นมา) ^{[ 66 ]}หรือ "ซิเลีย" สำหรับทั้งสอง (เช่น Hülsmann, 1992; ^{[ 67 ]} Adl et al., 2012; ^{[ 68 ]}บทความส่วนใหญ่ของCavalier-Smith ) โดยคงคำว่า "แฟลเจลลา" ไว้สำหรับโครงสร้างของแบคทีเรีย อย่างไรก็ตาม การใช้คำว่า "ซิเลีย" และ "แฟลเจลลา" เพื่อแยกแยะยูคาริโอตที่นำมาใช้ในบทความนี้ (ดู§  แฟลเจลลาเทียบกับซิเลียด้านล่าง) ยังคงเป็นเรื่องปกติ (เช่น Andersen et al., 1991; ^{[ 69 ]} Leadbeater et al., 2000) ^{[ 70 ]}

The core of a eukaryotic flagellum, known as the axoneme is a bundle of nine fused pairs of microtubules known as doublets surrounding two central single microtubules (singlets). This 9+2 axoneme is characteristic of the eukaryotic flagellum. At the base of a eukaryotic flagellum is a basal body, "blepharoplast" or kinetosome, which is the microtubule organizing center for flagellar microtubules and is about 500 nanometers long. Basal bodies are structurally identical to centrioles. The flagellum is encased within the cell's plasma membrane, so that the interior of the flagellum is accessible to the cell's cytoplasm.

Besides the axoneme and basal body, relatively constant in morphology, other internal structures of the flagellar apparatus are the transition zone (where the axoneme and basal body meet) and the root system (microtubular or fibrillar structures that extend from the basal bodies into the cytoplasm), more variable and useful as indicators of phylogenetic relationships of eukaryotes. Other structures, more uncommon, are the paraflagellar (or paraxial, paraxonemal) rod, the R fiber, and the S fiber.^[71]:63–84 For surface structures, see below.

Each of the outer 9 doublet microtubules extends a pair of dynein arms (an "inner" and an "outer" arm) to the adjacent microtubule; these produce force through ATP hydrolysis. The flagellar axoneme also contains radial spokes, polypeptide complexes extending from each of the outer nine microtubule doublets towards the central pair, with the "head" of the spoke facing inwards. The radial spoke is thought to be involved in the regulation of flagellar motion, although its exact function and method of action are not yet understood.^[72]

The regular beat patterns of eukaryotic cilia and flagella generate motion on a cellular level. Examples range from the propulsion of single cells such as the swimming of spermatozoa to the transport of fluid along a stationary layer of cells such as in the respiratory tract.^[73]

Although eukaryotic cilia and flagella are ultimately the same, they are sometimes classed by their pattern of movement, a tradition from before their structures have been known. In the case of flagella, the motion is often planar and wave-like, whereas the motile cilia often perform a more complicated three-dimensional motion with a power and recovery stroke.^[73] Yet another traditional form of distinction is by the number of 9+2 organelles on the cell.^[72]

Intraflagellar transport, the process by which axonemal subunits, transmembrane receptors, and other proteins are moved up and down the length of the flagellum, is essential for proper functioning of the flagellum, in both motility and signal transduction.^[74]

Eukaryotic flagella or cilia, probably an ancestral characteristic,^[75] are widespread in almost all groups of eukaryotes, as a relatively perennial condition, or as a flagellated life cycle stage (e.g., zoids, gametes, zoospores, which may be produced continually or not).^[76][77][68]

The first situation is found either in specialized cells of multicellular organisms (e.g., the choanocytes of sponges, or the ciliated epithelia of metazoans), as in ciliates and many eukaryotes with a "flagellate condition" (or "monadoid level of organization", see Flagellata, an artificial group).

Flagellated lifecycle stages are found in many groups, e.g., many green algae (zoospores and male gametes), bryophytes (male gametes), pteridophytes (male gametes), some gymnosperms (cycads and Ginkgo, as male gametes), centric diatoms (male gametes), brown algae (zoospores and gametes), oomycetes (asexual zoospores and gametes), hyphochytrids (zoospores), labyrinthulomycetes (zoospores), some apicomplexans (gametes), some radiolarians (probably gametes),^[78]foraminiferans (gametes), plasmodiophoromycetes (zoospores and gametes), myxogastrids (zoospores), metazoans (male gametes), and chytrid fungi (zoospores and gametes).

Flagella or cilia are completely absent in some groups, probably due to a loss rather than being a primitive condition. The loss of cilia occurred in red algae, some green algae (Zygnematophyceae), the gymnosperms except cycads and Ginkgo, angiosperms, pennate diatoms, some apicomplexans, some amoebozoans, in the sperm of some metazoans,^[79] and in fungi (except chytrids).

A number of terms related to flagella or cilia are used to characterize eukaryotes.^{[77][80][71]:60–63[81][82]} According to surface structures present, flagella may be:

• whiplash flagella (= smooth, acronematic flagella): without hairs, e.g., in Opisthokonta
• hairy flagella (= tinsel, flimmer, pleuronematic flagella): with hairs (= mastigonemessensu lato), divided in:
  • with fine hairs (= non-tubular, or simple hairs): occurs in Euglenophyceae, Dinoflagellata, some Haptophyceae (Pavlovales)
  • with stiff hairs (= tubular hairs, retronemes, mastigonemes sensu stricto), divided in:
    • bipartite hairs: with two regions. Occurs in Cryptophyceae, Prasinophyceae, and some Heterokonta
    • tripartite (= straminipilous) hairs: with three regions (a base, a tubular shaft, and one or more terminal hairs). Occurs in most Heterokonta
• stichonematic flagella: with a single row of hairs
• pantonematic flagella: with two rows of hairs
• acronematic: flagella with a single, terminal mastigoneme or flagellar hair (e.g., bodonids);^[83] some authors use the term as synonym of whiplash
• with scales: e.g., Prasinophyceae
• with spines: e.g., some brown algae
• with undulating membrane: e.g., some kinetoplastids, some parabasalids
• with proboscis (trunk-like protrusion of the cell): e.g., apusomonads, some bodonids^[84]

According to the number of flagella, cells may be: (remembering that some authors use "ciliated" instead of "flagellated")^[68][85]

• uniflagellated: e.g., most Opisthokonta
• biflagellated: e.g., all Dinoflagellata, the gametes of Charophyceae, of most bryophytes and of some metazoans^[79]
• triflagellated: e.g., the gametes of some Foraminifera
• quadriflagellated: e.g., some Prasinophyceae, Collodictyonidae
• octoflagellated: e.g., some Diplomonada, some Prasinophyceae
• multiflagellated: e.g., Opalinata, Ciliophora, Stephanopogon, Parabasalida, Hemimastigophora, Caryoblastea, Multicilia, the gametes (or zoids) of Oedogoniales (Chlorophyta), some pteridophytes and some gymnosperms

According to the place of insertion of the flagella:^[86]

• opisthokont: cells with flagella inserted posteriorly, e.g., in Opisthokonta (Vischer, 1945). In Haptophyceae, flagella are laterally to terminally inserted, but are directed posteriorly during rapid swimming.^[87]
• akrokont: cells with flagella inserted apically.
• subakrokont: cells with flagella inserted subapically.
• pleurokont: cells with flagella inserted laterally.

According to the beating pattern:

• gliding: a flagellum that trails on the substrate^[84]
• heterodynamic: flagella with different beating patterns (usually with one flagellum functioning in food capture and the other functioning in gliding, anchorage, propulsion or "steering").^[88]
• isodynamic: flagella beating with the same patterns.

Other terms related to the flagellar type:

• isokont: cells with flagella of equal length. It was also formerly used to refer to the Chlorophyta
• anisokont: cells with flagella of unequal length, e.g., some Euglenophyceae and Prasinophyceae
• heterokont: term introduced by Luther (1899) to refer to the Xanthophyceae, due to the pair of flagella of unequal length. It has taken on a specific meaning in referring to cells with an anterior straminipilous flagellum (with tripartite mastigonemes, in one or two rows) and a posterior usually smooth flagellum. It is also used to refer to the taxon. Heterokonta
• stephanokont: cells with a crown of flagella near its anterior end, e.g., the gametes and spores of Oedogoniales, the spores of some Bryopsidales. Term introduced by Blackman & Tansley (1902) to refer to the Oedogoniales.
• akont: cells without flagella. It was also used to refer to taxonomic groups, as Aconta or Akonta: the Zygnematophyceae and Bacillariophyceae (Oltmanns, 1904), or the Rhodophyceae (Christensen, 1962).