ในทางการแพทย์การเจาะเลือดหรือการเจาะเส้นเลือดดำคือกระบวนการเข้าถึงเส้นเลือดดำเพื่อวัตถุประสงค์ในการเก็บตัวอย่าง เลือดดำ (เรียกอีกอย่างว่าการเจาะเลือด ) หรือการบำบัดทางเส้นเลือดดำในด้านการดูแลสุขภาพ ขั้นตอนนี้ดำเนินการโดยนักวิทยาศาสตร์ห้องปฏิบัติการทางการแพทย์แพทย์ เจ้าหน้าที่ EMT บางคนพาราเมดิกนักเจาะ เลือด ช่างเทคนิค การฟอกไตและเจ้าหน้าที่พยาบาลอื่นๆ^{[ 1 ]}ในสัตวแพทยศาสตร์ขั้นตอนนี้ดำเนินการโดยสัตวแพทย์และ ผู้ ช่วย สัตวแพทย์

จำเป็นต้องปฏิบัติตามขั้นตอนมาตรฐานในการเก็บตัวอย่างเลือดเพื่อให้ได้ผลลัพธ์ทางห้องปฏิบัติการที่ถูกต้อง ข้อผิดพลาดใดๆ ในการเก็บเลือดหรือการเติมหลอดทดลองอาจทำให้ผลการตรวจทางห้องปฏิบัติการผิดพลาดได้^{[ 2 ]}

การเจาะเลือดเป็นหนึ่งในหัตถการทางการแพทย์ที่ทำกันบ่อยที่สุด และมักทำด้วยเหตุผล 5 ประการดังนี้:

1. เพื่อเก็บตัวอย่างเลือดสำหรับการวินิจฉัยโรค;
2. เพื่อตรวจสอบระดับของส่วนประกอบของเลือด^{[ 3 ]}
3. เพื่อให้การรักษาทางการแพทย์ รวมถึงยา โภชนาการ หรือเคมีบำบัด;
4. เพื่อกำจัดเลือดที่ออกเนื่องจากมีธาตุเหล็กหรือเม็ดเลือดแดง มากเกินไป หรือ
5. เพื่อเก็บรวบรวมเลือดไว้ใช้ในภายหลัง โดยส่วนใหญ่คือการถ่ายเลือดไม่ว่าจะเป็นการ ถ่ายให้ กับผู้บริจาคเองหรือถ่ายให้กับผู้อื่น

การตรวจเลือดเป็นเครื่องมือวินิจฉัยโรคที่สำคัญอย่างหนึ่งที่แพทย์สามารถใช้ได้ในระบบการดูแลสุขภาพ

โดยทั่วไปแล้ว การเจาะเลือดจะทำได้จากเส้นเลือดดำตื้นๆ บริเวณแขนส่วนบน^{[ 1 ]}เส้นเลือดดำมีเดียนคิวบิตัลซึ่งอยู่ภายในแอ่งคิวบิตัลด้านหน้าข้อศอกนั้น อยู่ใกล้กับผิวหนังโดยไม่มีเส้นประสาทขนาดใหญ่อยู่ใกล้เคียงมากนัก เส้นเลือดดำอื่นๆ ที่สามารถใช้ในการเจาะเลือดในแอ่งคิวบิตัล ได้แก่ เส้นเลือดดำเซฟาลิกเส้นเลือดดำบาซิลิกและเส้นเลือดดำมีเดียนแอนทีบราเคียล^{[ 4 ]}

สามารถเก็บ ตัวอย่างเลือดปริมาณเล็กน้อยได้โดย การเจาะปลายนิ้ว และเก็บตัวอย่างเลือดจากทารกได้โดยการเจาะส้นเท้าหรือจากเส้นเลือดที่หนังศีรษะโดยใช้เข็มฉีดยาแบบมีปีก

การเจาะเลือด (การกรีดเส้นเลือด) ยังเป็นวิธีการรักษาโรคบางชนิด เช่น โรคฮีโมโครมาโตซิส และ โรค โพลีไซทีเมียชนิดปฐมภูมิและทุติยภูมิ

จากการศึกษาผู้บริจาคโลหิตในปี 1996 (ใช้เข็มขนาดใหญ่กว่าในการบริจาคโลหิตเมื่อเทียบกับการเจาะเลือดตามปกติ) พบว่าผู้บริจาค 1 ใน 6,300 รายได้รับบาดเจ็บที่เส้นประสาท^{[ 5 ]}

ในบรรดาความเสี่ยงและผลข้างเคียง ได้แก่ อาการเวียนศีรษะ เหงื่อออก หรืออัตราการเต้นของหัวใจและความดันโลหิตลดลง^{[ 6 ]}

มีหลายวิธีในการเจาะเลือดจากเส้นเลือด และวิธีที่ใช้จะขึ้นอยู่กับอายุของผู้รับบริการ อุปกรณ์ที่มี และประเภทของการทดสอบที่ต้องการ

ในสหรัฐอเมริกา สหราชอาณาจักร แคนาดา และฮ่องกง การเก็บตัวอย่างเลือดส่วนใหญ่ใช้ระบบหลอดสุญญากาศ ระบบที่ใช้กันทั่วไปสองระบบคือVacutainer (บริษัท Becton, Dickinson and company) และ Vacuette (บริษัท Greiner Bio-One) อุปกรณ์ประกอบด้วยอะแดปเตอร์พลาสติก หรือที่เรียกว่าที่ยึดหลอดหรือที่ยึดเข็ม เข็มฉีดยา และหลอดสุญญากาศ ในบางกรณีอาจใช้กระบอกฉีดยาได้ โดยมักใช้เข็มผีเสื้อซึ่งเป็นสายสวนพลาสติกที่ติดอยู่กับเข็มสั้น ในประเทศกำลังพัฒนา ระบบหลอดสุญญากาศเป็นวิธีการเก็บตัวอย่างเลือดที่นิยมใช้มากกว่า

บริษัท Greiner Bio-One ผลิตหลอดเก็บเลือดแบบสุญญากาศพลาสติกเป็นครั้งแรกในปี 1985 ภายใต้ชื่อแบรนด์ VACUETTE ปัจจุบัน บริษัทหลายแห่งจำหน่ายหลอดสุญญากาศ เนื่องจากสิทธิบัตรสำหรับอุปกรณ์นี้ได้ตกเป็นของสาธารณะแล้ว หลอดเหล่านี้ผลิตขึ้นโดยการดูดก๊าซออกจากหลอดที่ปิดผนึกในปริมาณที่กำหนด เมื่อเสียบเข็มจากตัวเชื่อมต่อหรืออุปกรณ์ถ่ายโอนเข้าไปในจุกปิด หลอดจะดูดเลือดในปริมาณที่ต้องการโดยอัตโนมัติด้วยระบบสุญญากาศ

ระบบหลอดเก็บเลือดแบบสุญญากาศ (Evacuated Tube System หรือ ETS) พื้นฐานประกอบด้วยเข็ม ที่ยึดหลอด และหลอดเก็บเลือดแบบสุญญากาศ เข็มจะถูกติดเข้ากับที่ยึดหลอดโดยผู้ทำการเจาะเลือดก่อนการเก็บตัวอย่าง หรืออาจมาจากผู้ผลิตเป็นชิ้นเดียว เข็มจะยื่นออกมาจากปลายที่ยึดหลอด และมีเข็มอยู่ทั้งสองด้าน หลังจากทำความสะอาดบริเวณที่จะเจาะเลือดและรัดสายรัดแขนแล้ว ผู้ทำการเจาะเลือดจะเปิดฝาเข็มที่ติดอยู่กับที่ยึดหลอด สอดเข็มเข้าไปในเส้นเลือด จากนั้นเลื่อนหลอดเก็บเลือดแบบสุญญากาศเข้าไปในที่ยึดหลอด โดยที่จุกของหลอดจะถูกเจาะโดยปลายด้านหลังของเข็ม สุญญากาศในหลอดจะดูดเลือดที่ต้องการจากเส้นเลือดโดยอัตโนมัติ สามารถติดและถอดหลอดเก็บเลือดแบบสุญญากาศหลายหลอดจากเข็มเดียวได้ ทำให้สามารถเก็บตัวอย่างได้หลายตัวอย่างจากการเจาะเพียงครั้งเดียว ซึ่งเป็นไปได้เนื่องจากมีปลอกสำหรับเก็บตัวอย่างหลายตัวอย่าง ซึ่งเป็นชิ้นส่วนยางยืดหยุ่นที่ครอบอยู่บริเวณปลายด้านหลังของเข็มเจาะ เลือด เพื่อปิดผนึกเข็มจนกว่าจะถูกดันออกไป สิ่งนี้ช่วยป้องกันไม่ให้เลือดไหลออกมาจากด้านหลังของเข็มที่เสียบเข้าไปในเส้นเลือดอย่างอิสระ ในขณะที่ดึงหลอดทดลองแต่ละหลอดออกและเสียบหลอดต่อไปเข้าไป ข้อบังคับด้านความปลอดภัย ของ OSHAกำหนดให้เข็มหรือที่ยึดหลอดต้องมีอุปกรณ์ความปลอดภัยเพื่อปิดเข็มหลังจากขั้นตอนเพื่อป้องกันการบาดเจ็บจากการถูกเข็มแทงโดยไม่ตั้งใจ^{[ 7 ]}

นอกจากนี้ยังมีอุปกรณ์และอะแดปเตอร์ที่ใช้สำหรับเติมของเหลวลงในหลอดสุญญากาศจากชุดเข็มผีเสื้อและกระบอกฉีดยาอีกด้วย

มีเข็มหลายขนาดให้ผู้เชี่ยวชาญด้านการเจาะเลือดเลือกใช้ ขนาดที่ใช้กันทั่วไปมีดังนี้: เข็ม 21g (ฝาสีเขียว), เข็ม 22g (ฝาสีดำ), เข็มผีเสื้อ 21g (ฉลากสีเขียว), เข็มผีเสื้อ 23g (ฉลากสีฟ้าอ่อน) และเข็มผีเสื้อ 25g (ฉลากสีส้มหรือสีน้ำเงินเข้ม) (อย่างไรก็ตาม เข็มขนาดนี้ใช้เฉพาะในเด็กหรือกรณีฉุกเฉินเท่านั้น เนื่องจากมีขนาดเล็กมากจนอาจทำให้ตัวอย่างเลือดแตกตัวได้) นอกจากนี้ยังมีหลอดและขวดขนาดและปริมาตรต่างๆ ให้เลือกใช้สำหรับการทดสอบที่แตกต่างกัน^{[ 8 ]}

หลอดทดลองที่ใช้เก็บตัวอย่างเลือดอาจมีสารเติมแต่งอย่างน้อยหนึ่งชนิด โดยทั่วไป การทดสอบที่ต้องใช้เลือดครบส่วนจะต้องใช้ตัวอย่างเลือดที่เก็บในหลอดทดลองที่มีสารกันเลือดแข็งตัวชนิดEDTA EDTA จะจับกับแคลเซียมเพื่อป้องกันการแข็งตัวของเลือด EDTA เป็นที่นิยมใช้ในการทดสอบทางโลหิตวิทยาเพราะทำลายโครงสร้างเซลล์น้อยที่สุด โซเดียมซิเตรตเป็นสารกันเลือดแข็งตัวที่ใช้ในตัวอย่างที่เก็บสำหรับการทดสอบการแข็งตัวของเลือด การทดสอบทางเคมีและภูมิคุ้มกันวิทยาโดยส่วนใหญ่จะทำกับซีรั่ม ซึ่งได้จากการแข็งตัวของเลือดแล้วแยกตัวอย่างเลือดโดยใช้เครื่องเหวี่ยงแยกสาร ตัวอย่างเหล่านี้จะถูกเก็บในหลอดที่ไม่มีสารเติมแต่งหรือหลอดที่มี สารกระตุ้น การแข็งตัว ของเลือด สาร กระตุ้นการแข็งตัวของเลือดนี้อาจรบกวนการทดสอบ บางอย่าง ดังนั้นจึงแนะนำให้ใช้หลอดธรรมดาในกรณีเหล่านี้ แต่จะทำให้การทดสอบล่าช้า หลอดที่มีลิเธียมเฮปารินหรือโซเดียมเฮปารินก็มักใช้สำหรับการทดสอบทางเคมีหลายชนิดเช่นกัน เนื่องจากไม่จำเป็นต้องรอให้เลือดแข็งตัวและสามารถนำไปเหวี่ยงแยกสารได้ทันทีหลังจากเก็บตัวอย่าง มีการใช้ ส่วนผสมของโซเดียมฟลูออไรด์และโพแทสเซียมออกซาเลตในการทดสอบกลูโคส เนื่องจากสารเติมแต่งเหล่านี้ช่วยป้องกันการแข็งตัวของเลือดและหยุดกระบวนการไกลโคไลซิส ทำให้ระดับกลูโคสในเลือดคงที่หลังจากเก็บตัวอย่าง^{[ 9 ]}หลอดพิเศษอีกชนิดหนึ่งคือหลอดสีอำพันทึบแสงที่ใช้เก็บเลือดสำหรับวิเคราะห์สารที่ไวต่อแสง เช่นบิลิรูบิน^{[ 10 ]}

หลอดทดลองจะมีฉลากระบุสารเติมแต่งที่บรรจุอยู่ แต่จุกปิดของแต่ละหลอดจะมีรหัสสีตามสารเติมแต่งเช่นกัน แม้ว่าสีจะแตกต่างกันไปตามผู้ผลิต แต่โดยทั่วไปแล้วสีของจุกปิดจะสัมพันธ์กับสารเติมแต่งแต่ละชนิดตามที่ระบุไว้ด้านล่าง เนื่องจากสารเติมแต่งจากแต่ละหลอดอาจตกค้างอยู่บนเข็มที่ใช้เติมหลอด จึงต้องดูดเลือดตามลำดับที่กำหนด เพื่อให้แน่ใจว่าการปนเปื้อนข้ามจะไม่ส่งผลเสียต่อการทดสอบตัวอย่างหากต้องดูดเลือดหลายหลอดพร้อมกัน "ลำดับการดูด" จะแตกต่างกันไปตามวิธีการเก็บตัวอย่าง ลำดับการดูดหมายถึงลำดับที่ถูกต้องในการเติมเลือดลงในหลอดเพื่อป้องกันการปนเปื้อนของสารเติมแต่งสำหรับการทดสอบบางอย่าง ด้านล่างนี้คือลำดับการดูดที่โดยทั่วไปจำเป็นสำหรับวิธีการเก็บตัวอย่างแบบระบบหลอดสุญญากาศ (ETS) และหลอดที่ใช้กันทั่วไป โดยระบุสารเติมแต่งและสี: ^{[ 11 ] [ 12 ]}

ในบางกรณี การเจาะเลือดจากเส้นเลือดฝอย (หรือที่เรียกว่าการเจาะผิวหนัง) จะถูกนำมาใช้แทนการเจาะเลือดจากเส้นเลือดดำ ซึ่งเป็นสถานการณ์ที่พบได้บ้างในผู้ป่วยเด็ก ผู้ป่วยอาจมีแผลไหม้รุนแรงหรือผิวหนังเสียหาย หรือเมื่อการเข้าถึงเส้นเลือดดำทำได้ยาก ในกรณีที่ต้องเจาะเลือดจากเส้นเลือดฝอย ลำดับการเจาะจะเปลี่ยนไป สำหรับการเก็บเลือดจากเส้นเลือดฝอย แนะนำให้ทำการทดสอบก๊าซในเลือดก่อน ตามด้วยหลอดที่มีสารเติมแต่ง EDTA เพื่อป้องกันไม่ให้เลือดแข็งตัวระหว่างการเก็บ ดังนั้น ลำดับการเจาะตามปกติจึงไม่สามารถใช้ได้เมื่อเลือกที่จะใช้การเจาะเลือดจากเส้นเลือดฝอยแทนการเจาะเลือดจากเส้นเลือดดำ^{[ 13 ]}

มีวิธีการจัดการความเจ็บปวดหลายวิธีที่สามารถใช้ได้เมื่อทำการเจาะเลือดในเด็ก วิธีที่มีประสิทธิภาพ ได้แก่ การใช้ลิโดเคน สเปรย์เย็น หรือเทคนิคการเบี่ยงเบนความสนใจ วิธีการใช้ลิโดเคนได้รับการแนะนำว่ามีประสิทธิภาพมากที่สุดในการลดความเจ็บปวดระหว่างการเจาะเลือด^{[ 21 ]}มีวิธีการส่งลิโดเคนหลายวิธี สูตร EMLA ที่ประกอบด้วยส่วนผสมของลิโดเคนและพริโลเคนสามารถใช้ได้ และมีจำหน่ายในรูปแบบครีมหรือแผ่นแปะ โดยทั่วไปจะใช้ก่อนการเจาะเลือดประมาณหนึ่งชั่วโมง การใช้ไอออนโทโฟเรซิสของลิโดเคนเป็นเทคนิคที่มีประสิทธิภาพมากกว่า วิธีนี้ใช้ระบบอิเล็กโทรดในการขนส่งลิโดเคนไอออนไนซ์ผ่านผิวหนัง และสามารถจัดการความเจ็บปวดได้อย่างมีประสิทธิภาพภายในไม่กี่นาที^{[ 22 ]}อีกวิธีหนึ่งเกี่ยวข้องกับการ "ฉีด" ลิโดเคนแบบไม่ใช้เข็ม และใช้แรงดันจากก๊าซอัดในการส่งลิโดเคนผ่านผิวหนัง^{[ 23 ]}

สำหรับเด็กอายุต่ำกว่า 12 เดือน สามารถใช้สารละลายซูโครสที่ให้ทางปากเป็นวิธีการบรรเทาอาการปวดเล็กน้อยระหว่างการเจาะเลือดและขั้นตอนอื่นๆ สำหรับการใช้งานทางคลินิก แนะนำให้ให้ซูโครสทางปากในปริมาณน้อยสองนาทีก่อนเริ่มขั้นตอนเพื่อลดความไม่สบายตัวของทารก ข้อดีของวิธีการนี้ ได้แก่ ผลข้างเคียงน้อยที่สุด หาได้ง่าย และบริหารยาได้ง่าย^{[ 24 ]}

การรักษาอาการปวดจากการเจาะเลือดในเด็กโดยไม่ใช้ยา ได้แก่การสะกดจิตและเทคนิคการเบี่ยงเบนความสนใจ รวมถึงการฝึกหายใจ การรักษาเหล่านี้ช่วยลดอาการปวดที่รายงานด้วยตนเองเมื่อใช้ร่วมกับการบำบัดทางความคิดและพฤติกรรม (CBT) ^{[ 25 ]}

บุคลากรทางการแพทย์บางคนนิยมใช้เทคนิคการเจาะเลือดด้วยเข็มฉีดยาSarstedtผลิตระบบเจาะเลือด (S-Monovette) ที่ใช้หลักการนี้^{[ 26 ]}วิธีนี้อาจเป็นที่นิยมในผู้สูงอายุ ผู้ป่วยโรคมะเร็ง แผลไฟไหม้รุนแรง โรคอ้วน หรือในกรณีที่เส้นเลือดไม่แข็งแรงหรือเปราะบาง เนื่องจากเข็มฉีดยาทำงานด้วยมือ ปริมาณแรงดูดจึงสามารถควบคุมได้ง่าย ซึ่งเป็นประโยชน์อย่างยิ่งเมื่อเส้นเลือดมีขนาดเล็กซึ่งอาจยุบตัวลงภายใต้แรงดูดของหลอดสุญญากาศ ในเด็กหรือสถานการณ์อื่นๆ ที่ปริมาณเลือดที่ได้อาจมีจำกัด การทราบปริมาณเลือดที่สามารถเก็บได้ก่อนที่จะนำไปผสมกับสารเติมแต่งต่างๆ ที่ห้องปฏิบัติการต้องการจะเป็นประโยชน์ อีกทางเลือกหนึ่งคือการเจาะเลือดจากสายสวนที่ใส่ไว้^{[ 27 ]}

บางครั้งจำเป็นต้องเก็บตัวอย่างเลือดเพื่อเพาะเชื้อ เลือดปกติจะปราศจากเชื้อ แต่หากสงสัยว่ามีเชื้อก่อโรค การเพาะเชื้อจะเป็นประโยชน์ในการตรวจหาการติดเชื้อ เมื่อเจาะเลือดเพื่อเพาะเชื้อ ให้ใช้สารละลายที่ปราศจากเชื้อ เช่นเบตาดีนแทนแอลกอฮอล์ควรทำโดยใช้ถุงมือที่ปราศจากเชื้อ โดยไม่เช็ดสารละลายที่ใช้ในการผ่าตัดออก ไม่สัมผัสบริเวณที่เจาะ หรือทำให้กระบวนการที่ปราศจากเชื้อเสียหายแต่อย่างใด เป็นสิ่งสำคัญอย่างยิ่งที่ต้องดำเนินการในลักษณะที่ปราศจากเชื้อมากที่สุดเท่าที่จะเป็นไปได้ เนื่องจากแบคทีเรียที่อาศัยอยู่บนผิวหนังทั่วไปที่พบในเลือดที่เพาะเชื้ออาจบ่งชี้ถึงโรคเยื่อหุ้มหัวใจอักเสบแต่ส่วนใหญ่มักพบว่าเป็นสิ่งปนเปื้อน แนะนำให้ใช้วิธีการขัดผิวเพื่อเตรียมผิวหนัง ซึ่งจะช่วยขจัดเซลล์ผิวหนังที่ตายแล้วชั้นบนสุดพร้อมกับแบคทีเรียที่ปนเปื้อน^{[ 28 ]} โดยทั่วไปจะใช้โพวิโดน-ไอโอดีน แต่ในสหราชอาณาจักรนิยมใช้ คลอร์เฮกซิดีน 2% ในเอทานอล 70% หรือไอโซโพรพิลแอลกอฮอล์ และต้องปล่อยให้แห้งก่อน ฝาปิดของภาชนะใดๆ ที่ใช้ในการเก็บตัวอย่างเลือดเพื่อเพาะเชื้อควรได้รับการฆ่าเชื้อด้วยสารละลายที่คล้ายกัน ห้องปฏิบัติการบางแห่งจะไม่แนะนำให้ใช้ไอโอดีน เนื่องจากเชื่อว่าไอโอดีนจะทำให้จุกยางที่เลือดไหลเข้าขวดเสื่อมสภาพ ทำให้สิ่งปนเปื้อนเข้าไปในภาชนะได้ อย่างไรก็ตาม การศึกษาบางชิ้นพบว่าข้อกังวลนี้ไม่ได้รับการสนับสนุน เนื่องจากไม่พบความแตกต่างอย่างมีนัยสำคัญระหว่างอัตราการปนเปื้อนกับสารฆ่าเชื้อที่แตกต่างกันเหล่านี้^{[ 29 ]}

เลือดจะถูกเก็บลงในขวดขนส่งพิเศษ ซึ่งมีลักษณะคล้ายหลอดสุญญากาศแต่มีรูปร่างแตกต่างกัน ขวดเพาะเชื้อเลือดมีตัวกลางในการขนส่งเพื่อรักษาจุลินทรีย์ใดๆ ที่มีอยู่ระหว่างการขนส่งไปยังห้องปฏิบัติการเพื่อทำการเพาะเลี้ยง เนื่องจากไม่ทราบว่าเชื้อก่อโรคเป็นแบบไม่ใช้ออกซิเจน (ดำรงชีวิตได้โดยปราศจากออกซิเจน) หรือแบบใช้ออกซิเจน (ดำรงชีวิตได้โดยอาศัยออกซิเจน) จึงต้องเก็บเลือดเพื่อทดสอบทั้งสองแบบ โดยจะเติมเลือดลงในขวดแบบใช้ออกซิเจนก่อน จากนั้นจึงเติมลงในขวดแบบไม่ใช้ออกซิเจน อย่างไรก็ตาม หากทำการเก็บเลือดโดยใช้เข็มฉีดยา จะต้องเติมเลือดลงในขวดแบบไม่ใช้ออกซิเจนก่อน หากใช้ชุดเก็บเลือดแบบผีเสื้อ จะต้องเติมเลือดลงในขวดแบบใช้ออกซิเจนก่อน เพื่อปล่อยอากาศใดๆ ในท่อเข้าไปในขวดที่มีออกซิเจน^{[ 30 ]}

ขวดเก็บตัวอย่างเลือดที่ออกแบบมาเป็นพิเศษ ช่วยลดความจำเป็นในการใช้เข็มฉีดยาหรือหลอดเก็บตัวอย่างเลือดแบบผีเสื้อ ขวดที่ออกแบบมาเป็นพิเศษเหล่านี้มีคอยาวที่พอดีกับที่ใส่หลอดเก็บตัวอย่างเลือดแบบสุญญากาศที่ใช้สำหรับการเจาะเลือดตามปกติ ขวดเหล่านี้ยังช่วยให้สามารถเก็บตัวอย่างเลือดอื่นๆ ผ่านหลอดเก็บตัวอย่างเลือดแบบสุญญากาศได้โดยไม่ต้องเจาะเลือดเพิ่มเติม

ปริมาณเลือดที่เก็บได้มีความสำคัญต่อการเก็บจุลินทรีย์อย่างเหมาะสม โดยทั่วไปจะใช้เลือดไม่เกิน 10 มิลลิลิตร แต่ปริมาณอาจแตกต่างกันไปตามคำแนะนำของผู้ผลิตขวดเก็บเลือด เมื่อเก็บทั้งขวดแอโรบิกและแอนแอโรบิก จะต้องใช้ปริมาณรวม 20-30 มิลลิลิตรต่อชุด เพื่อให้ได้ 10 มิลลิลิตรสำหรับแต่ละขวดทั้งสองขวด^{[ 31 ]}การเก็บเลือดในเด็กโดยทั่วไปจะใช้เพียง 1-5 มิลลิลิตรก็เพียงพอแล้ว แต่จะแตกต่างกันไปตามน้ำหนักของเด็ก หากเก็บเลือดน้อยเกินไป อัตราส่วนของเลือดต่อน้ำซุปอาหารจะยับยั้งการเจริญเติบโตของจุลินทรีย์ หากเก็บเลือดมากเกินไป อัตราส่วนของเลือดต่อน้ำซุปอาหารก็จะไม่เอื้อต่อการเจริญเติบโตของจุลินทรีย์เช่นกัน และมีความเสี่ยงต่อภาวะโลหิตจางที่เกิดจากโรงพยาบาลด้วย

จากนั้นจะนำขวดไปบ่มในเครื่องเฉพาะเป็นเวลา 24 ชั่วโมง ก่อนที่เจ้าหน้าที่ห้องปฏิบัติการจะทำการศึกษาและ/หรือทดสอบ ขั้นตอนนี้ช่วยให้แบคทีเรียจำนวนน้อยมาก (อาจมีเพียง 1 หรือ 2 ตัว) เพิ่มจำนวนขึ้นจนถึงระดับที่เพียงพอสำหรับการระบุชนิดและ/หรือการทดสอบความต้านทานยาปฏิชีวนะ ขวดเพาะเชื้อในเลือดสมัยใหม่มีตัวบ่งชี้อยู่ที่ฐานซึ่งจะเปลี่ยนสีเมื่อมีแบคทีเรียเจริญเติบโต และสามารถอ่านค่าได้โดยอัตโนมัติด้วยเครื่องมือ (ด้วยเหตุนี้จึงไม่ควรแกะสติกเกอร์บาร์โค้ดที่ติดอยู่บนขวดเหล่านี้ออก เนื่องจากระบบอัตโนมัติของห้องปฏิบัติการจะนำไปใช้)

สามารถเก็บตัวอย่างเลือดจากสัตว์ทดลองที่มีชีวิตได้โดยใช้วิธีการดังต่อไปนี้: ^{[ 32 ] [ 33 ]}

• การเก็บตัวอย่างเลือดโดยไม่ต้องใช้ยาชา:
  • เส้นเลือดดำซาเฟนัส (หนูแรท หนูเมาส์ หนูตะเภา)
  • เส้นเลือดดำที่หลังเท้า (หนูแรท, หนูเมาส์)
• การเจาะเลือดที่ต้องใช้ยาชา (ยาชาเฉพาะที่/ยาชาทั่วไป):
  • เส้นเลือดที่หาง (หนูแรท, หนูเมาส์)
  • การตัดหาง (หนู)
  • โพรงเบ้าตา (หนูแรท, หนูเมาส์)
  • เส้นเลือดดำจูงกูลาร์ (หนูแรท, หนูเมาส์)
  • ท่อสวนชั่วคราว (หนูแรท, หนูเมาส์)
  • การใส่สายสวนหลอดเลือด (หนูตะเภา, เฟอร์เร็ต)
  • เส้นเลือดที่ข้อเท้า (หนูตะเภา)
  • เส้นเลือดดำหรือเส้นเลือดแดงบริเวณขอบใบหู (กระต่าย)
• ขั้นตอนสุดท้าย:
  • การเจาะหัวใจ (หนูแรท, หนูเมาส์, หนูตะเภา, กระต่าย, เฟอร์เร็ต)
  • โพรงเบ้าตา (หนูแรท, หนูเมาส์)
  • Posterior vena cava (หนู, หนูเมาส์)

ปริมาณการเก็บตัวอย่างเลือดมีความสำคัญมากในสัตว์ทดลอง การเก็บเลือดที่ไม่ใช่เพื่อจุดประสงค์สุดท้ายโดยไม่ทดแทนของเหลวจะจำกัดไว้ที่ 10% ของปริมาณเลือดที่ไหลเวียนทั้งหมดในสัตว์ที่แข็งแรงและปกติที่โตเต็มวัยในแต่ละครั้ง และอาจเก็บซ้ำได้หลังจากสามถึงสี่สัปดาห์ ในกรณีที่จำเป็นต้องเก็บตัวอย่างเลือดซ้ำในช่วงเวลาสั้นๆ สามารถเก็บได้สูงสุด 0.6 มล./กก./วัน หรือ 1.0% ของปริมาณเลือดทั้งหมดของสัตว์ทุกๆ 24 ชั่วโมง ปริมาณเลือดโดยประมาณในสัตว์ที่โตเต็มวัยคือ 55 ถึง 70 มล./กก. น้ำหนักตัว ควรระมัดระวังเป็นพิเศษสำหรับสัตว์ที่อายุมากและอ้วน หากปริมาณการเก็บเลือดเกิน 10% ของปริมาณเลือดทั้งหมด อาจจำเป็นต้องทดแทนของเหลว สารละลายแลคเตทริงเกอร์ (LRS) ได้รับการแนะนำให้เป็นสารทดแทนของเหลวที่ดีที่สุดโดยสถาบันสุขภาพแห่งชาติ (NIH) หากปริมาณการเก็บเลือดเกิน 30% ของปริมาณเลือดที่ไหลเวียนทั้งหมด ควรดูแลอย่างเหมาะสมเพื่อป้องกันไม่ให้สัตว์เกิดภาวะขาดน้ำ^{[ 33 ]}

• เลือดแดงจะถูกนำมาจากหลอดเลือดแดงแทนที่จะเป็นหลอดเลือดดำ
• การตรวจเลือด  – การวิเคราะห์ทางห้องปฏิบัติการที่ทำกับตัวอย่างเลือด